Publikasjoner
NIBIOs ansatte publiserer flere hundre vitenskapelige artikler og forskningsrapporter hvert år. Her finner du referanser og lenker til publikasjoner og andre forsknings- og formidlingsaktiviteter. Samlingen oppdateres løpende med både nytt og historisk materiale. For mer informasjon om NIBIOs publikasjoner, besøk NIBIOs bibliotek.
2002
Forfattere
Carl Gunnar FossdalSammendrag
Allerede på 1960-tallet drev Skogforsk med genetikk og planteforedling. I 1988 begynte vi med celle- og vevskulturer, og i 1992 etablerte Skogforsk et molekylærbiologisk laboratorium Vi bygger opp kunnskap om viktige biologiske prosesser i skog som påvirker skogens helse, og som kan utnyttes i forvaltning og verdiskaping. Det fokuseres på trærnes forsvar overfor abiotisk og biotisk stress, hvordan de tilpasser seg klimaet, og beskrivelse og kvantifisering av vekst og kvalitet. Vi prøver å forstå hvorfor trærne varierer i viktige egenskaper, og søker å finne svar på hvordan variasjonen kan utnyttes og tas vare på. Arbeidet er i hovedsak av eksperimentell karakter hvor forsøk i laboratorier, klimakammer, veksthus og felt benyttes. Tre bioteknologiske prosjekter ved skogforsk: PROTEIN-POLYFENOL KOMPLEKSERING: Hvilken rolle har forhåndslagrede PR-proteiner i granas forsvar mot patogene sopp? TØRKE PROSJEKT: Hvilke genprodukter induseres etter tørke behandling i forhold til ustressede og soppinfiserte granplanter. EST sekvens og database prosjekt (internt): Til bruk for array teknologi for å se på ekspresjon mønster (abiotisk og biotisk stress) og til genetisk forskning på gran.
Forfattere
Halvor SolheimSammendrag
Det er ikke registrert sammendrag
Forfattere
Berit Skoglund SkåtøySammendrag
Beskrivelse av treslaget. Utbredelse. Ved. Krav til voksested. Bruk i eldre tider. Folkemedisin. Utnyttelse av taxol i dag. Økonomisk betydning. Fredete barlindbestand.
Forfattere
Ivar GjerdeSammendrag
Det er ikke registrert sammendrag
Forfattere
Toril Drabløs EldhusetSammendrag
Det er ikke registrert sammendrag
Sammendrag
Det er ikke registrert sammendrag
Forfattere
Tor MykingSammendrag
Det er ikke registrert sammendrag
Sammendrag
Det er ikke registrert sammendrag
Forfattere
Terje Birkeland P.J. Houen Erlend Ystrøm Haartveit V. Kilde P. Lind Knut Magnar Sandland Kjell Vadla Audun ØvrumSammendrag
Det er ikke registrert sammendrag
Forfattere
Nicholas ClarkeSammendrag
In natural waters, total organic carbon (TOC) is the sum of particulate and dissolved organic carbon. Dissolved organic carbon (DOC) is operationally defined, usually as organic carbon that passes through a 0.45 µm filter. Cellulose acetate or nitrate filters should not be used for this purpose due to contamination or adsorption problems. Glass fibre filters are preferable. Although the discussion below concerns DOC, much of it applies to TOC as well. Organic carbon is most often determined after oxidation to CO2 using combustion, an oxidant such as persulphate, UV or other high-energy radiation, or a combination of some of these. If only UV radiation with oxygen as oxidant is used, low DOC values may be obtained in the presence of humic substances. A variety of methods are used for detection, including infrared spectrometry, titration and flame ionization detection after reduction to methane. Always follow the instrument manufacturer’s instructions. For determination of dissolved organic carbon, dissolved inorganic carbon must be either removed by purging the acidified (for example with phosphoric acid) sample with a gas which is free from CO2 and organic compounds, or determined and subtracted from the total dissolved carbon. If acidification followed by purging is used, care should be taken as volatile organic compounds may also be lost. After acidification, remove CO2 by blowing a stream of pure carbon-free inert gas through the system for at least 5 minutes. Carbon is ubiquitous in nature, so reagents, water, and glassware cannot be completely cleaned of it. Method interferences (positive bias) may be caused by contaminants in the carrier gas, dilution water, reagents, glassware, or other sample processing hardware (for example a homogenization device). All of these materials must be routinely demonstrated to be free from interference under the conditions of analysis by running reagent blanks. Plastic bottles can bleed carbon into water samples, especially when they are new, or when they are used for low-level samples (less than 200 ppb C). Any new bottles (especially plastic) should ideally be filled with clean water for a period of several days or boiled in water for a few hours before use. The use of high purity or purified reagents and gases helps to minimise interference problems. It is very important to use ultra-pure water with a carbon filter or boiled distilled water just before preparing stock and standard solutions, in order to remove dissolved CO2. The stock solution should not be kept too long (about one week). For most DOC instruments a correction for DOC (due to dissolved CO2) in the dilution water used for calibration standards is necessary, especially for standards below 10 ppm C. The carbon in the blank should only be subtracted from standards and not from samples. For calibration, standard solutions are most often potassium hydrogen phthalate for total dissolved carbon and sodium bicarbonate for dissolved inorganic carbon. The DOC concentration should be within the working range of the calibration. If necessary the sample can be diluted. Sample DOC below about 50 ppb C can be affected by atmospheric exposure. In these cases, sampling bottles should be kept closed when possible, and autosampler vials should be equipped with septa for needle piercing by the autosampler.